酶免疫技术

出处:按学科分类—农业科学 中国农业出版社《兽医微生物实验诊断手册》第168页(13383字)

酶免疫技术是用酶标记抗体或抗原,以酶促反应指示免疫反应的一类测定相应抗原或抗体的性质、含量及其分布部位的方法。是继荧光免疫与放射免疫技术之后的又一类非放射性标记免疫技术。酶免疫技术具有标记物稳定性好,无放射性污染的优点,还可利用催化标记物进行放大和自动化分析处理。本法包括酶免疫组织化学和酶免疫测定两大类。前者主要用于抗原或抗体的定位分析,后者则主要用于抗原抗体的定性定量分析。

一、酶联免疫吸附试验(Enzyme-linked Immunosorbent Assay ELISA)

本法是将抗原或抗体固化于某种载体的表面,并不使其丧失免疫活性,而将相应抗体或抗原用酶标记,使其既保有酶性又带有免疫活性。当它们之间互相反应后,去掉游离酶标记物,即可用酶-底物反应来指示抗原-抗体的结合,从而达到测定抗原抗体的目的。

(一)酶标记物的制备

1.常用酶 常用于EIA中酶主要有辣根过氧化物酶(Horseradish peroxidase HPP)、碱性磷酶(Alkaline phosphatase AKP)、β-半乳糖苷酶(β-D-Galactosidase β-Gal)、葡萄糖氧化酶(Glucose oxidase GO)等。由于HRP活性稳定,容易标记,其活性受标记的影响不大,来源方便,价格相对便宜。故此,仍被普遍使用。

2.免疫球蛋白提纯 用作标记用的免疫球蛋白应为高纯度的制备物(参照上节),在必要时,除了进行盐析,凝胶过滤,离子交换纯化外,还需用亲和层析法制备。

3.葡萄球菌A蛋白(SPA) SPA是金黄色葡萄球菌细胞壁上的一种结构蛋白,它能与很多动物的IgG与IgM等抗体上FC片段结合,故常以其代替动物的抗抗体用于简接法ELISA。已有商品供应。

4.标记方法 以HRP标记抗体为例说明标记程序。

(1)过碘酸钠氧化法(Nakane氏法)

①称取4mg辣根过氧化物酶(RZ=3.0,活性单位200U/mg蛋白),溶于1.0ml蒸馏水中,加入0.2ml新鲜配制的0.1Mol/L的NaIO4,置室温下搅拌20分钟,此时溶液颜色从棕黄色变为灰绿色,如颜色不变,需添加NaIO4溶液;

②于4℃下对1Mol/L醋酸钠-醋酸缓冲液(pH4.4)中透析过夜;

③将1ml含8mgIgG或4mgA蛋白的生理盐水溶液加于酶溶液中,立即加入15μl1Mol/L碳酸盐缓冲液(pH9.5)于室温下搅拌2h;

④于混合液中加入0.1ml新鲜配制的NaBH4或KBH4溶液(4mg/ml H2O),于4℃下放置2h。于4℃下对PBS透析过夜。保存于4℃下予以纯化。

(2)一步戊二醛法(Avrameas氏法)

①将5mg辣根过氧化物酶溶于0.5ml PBS(pH7.2)抗体溶液中(含IgG2.0mg),对PBS透析过夜(4℃);

②用PBS补足体积达1.25ml,加入10μl25%戊二醛溶液,混匀,置室温下放置2h,于4℃对2000ml PBS透析过夜,换液一次;

③用PBS将混合液稀释成4ml,保存于4℃下,待纯化。

(3)二步戊二醛法

①将10mg辣根过氧化物酶溶于0.2ml含1.25%戊二醛的PBS(pH6.8)中,室温下放置过夜;

②对生理盐水透析(或过Sephedex,G-25柱一次),以去掉游离戊二醛,用生理盐水调整到1.0ml,若体积过大,应予浓缩,此即为活化酶液;

③用1ml含5mg IgG与1.0ml活化酶混合,加入0.1ml碳酸盐缓冲液(pH9.5),混匀后于4℃下放置24h;

④加入0.1ml0.2Mol/L赖氨酸溶液,于室温下放置2h,对PBS(pH7.2)透析过夜(4℃),待纯化。

5.标记物的纯化 纯化的目的是除去标记物中游离的酶成分,降低非特异性反应,除去未标记抗体,以提高标记物的比活性,常用方法有:盐析法和凝胶过滤(参见上节)。

6.酶标物的保存 将上述纯化的酶标记物溶液,加入血清白蛋白(BSA)至终浓度达1%有助保存,如需长期保存,则加入等体积的甘油,分小瓶保存于-20℃下即可,切忌反复冻融。在条件许可的情况下,最好用冷冻、干燥、真空保存于低温(4℃~8℃)。

冻干时,可用0.5%BSA的PBS溶液,或蔗糖溶液、右旋糖苷溶液将酶稀释,小瓶分装,再进行冻干。

(二)材料和试剂

1.固相载体 常有用作ELISA的固相载体有以下几类。

(1)聚苯乙烯微量滴定板,过去主要靠进口(如Dyna rch Lab Inc及Organon Tekenick公司的产品),近几年国内也有产品供应,常用4×10孔和12×8孔板,由于其非特异性吸附低,试验效果很好,特别适应于测定抗体的间接法。

(2)聚氯乙烯微量滴定板,此板的吸附能力比聚苯乙烯板的强,单位面积内吸附的蛋白量多,吸附速率高,特别适应干测定抗原。

(3)聚苯乙烯珠及试管,也是常用的固相材料。此外,还有聚苯乙烯反应条也得到了广泛应用。

原则上,以上材料出厂后,不需进行处理。相反,用酸、碱等处理过的材料的吸附性能会降低。鉴于国产材料出厂时把关不严之弊,在使用前,先应认真挑选,去掉那些表面粗糙,粘有污物,透明度差的板,再经自来水冲洗数次后,浸泡于蒸馏水中过夜,在40℃下烘干即可使用。

2.包被缓冲液(碳酸盐-重碳酸盐缓冲液0.1Mol/L pH9.6)

Na2CO3 0.59g

NaHCO3 2.93g

NaNO3 0.2g

H2O 1000ml

于4℃下保存,最多使用2周。

如果此液不理想,可改换较低pH的Tris缓冲液或PBS,某些单克隆抗体就是如此。

PBS(0.1MIL,pH7.4)

NaCl 8g

KH2PO4 0.2g

Na2HPO4·12H2 O 2.9g

KCl 0.2g

H2O 1000ml

于4℃下保存。

4.PBS-T PBS-T用作洗涤用,是在PBS中按0.05%加入吐温20即可。

5.稀释液 于PBS-T中加入BSA终浓度达0.5%。

6.终止液(2Mol/L H2SO4)或0.1%明胶或4%血清。

H2SO4(浓) 22.2ml

H2O 177.8ml

7.酶底物溶液 酶催化的底物具有高度的专一性,不同的酶所用的底物是不同的。过氧化物酶底物液的配制:

(1)邻苯二胺(OPD) 先配制柠檬酸-磷酸盐缓冲液(pH5.4),即将0.1Mol/L柠檬酸24.7ml与0.2Mol/L Na2HPO4·12HO2 25.7ml混和,然后将20mg OPD溶于50ml缓冲液中,临用前加入20μl30%H2O2。此溶液对光敏感,应避强光直射,现配现用,当反应20~30分钟后,溶液显橙黄色,用硫酸终止后显棕黄色,在波长490nm处测定。

(2)3.3′,5.5′-四甲基联苯胺(TMB) 10mg TMB溶于1.0ml二甲亚砜中,并将其逐滴加入100ml0.1Mol/L醋酸钠柠檬酸缓冲液(pH6.0)中,加入20μl30%H2O2,现配现用。当酶分解TMB时,颜色为苍绿色,当用2Mol/L H2SO4终止后,而呈亮黄色,在波长450nm处测定。

(3)5-氨基水杨酸(5-ASA) 结晶5-氨基水杨酸100mg溶干100ml 0.01Mol/L PB(pH6.0)中,含1m Mol/L EDTA。临用前加入20μl30%H2O2。反应终止液用1Mol/L NaOH溶液,颜色为棕色,在波长450nm处测定。

8.酶联免疫检测仪 可用华东电子管厂生产的DG3022A型酶联免疫检测仪,该机结构简单,使用方便,微机控制,结果数字显示,自动打字,并可输入程序,判定结果。

(三)试验的基本程序

1.包被 将一定浓度(经预测确定)的抗原(或抗体)溶于包被缓冲液中,加入微量滴定板,每孔100μl,置4℃下作用12h,用PBS-T洗涤3次,甩干。

2.分层加样 各孔加入与包被物相对应的试样100μl,37℃反应1~2h,同上法洗涤3次,根据试验需要可加一层、二层或更多层次,每加一层均需同上法反应、洗涤。

3.加入酶标记物 最后一层必须加入与前一层相对的标记抗体(或抗原),也可用能与上一层相结合的其他酶标记物,如酶标SPA。37℃作用1~2h后,洗涤3次。

4.显色 各孔加入底物溶液100μl,室温20~30min,加2MH2SO4 50μl终止反应,本法最常用的底物溶液为OPD液。

5.测定吸光值(A),在ELISA检测仪上以指定波长测定A值,用OPD显色所用波长为490nm,定性试验亦可用肉眼观察,根据颜色深浅判定结果,橙色或黄色者判为阳性,浅黄而接近无色,与对照无显着差异者判为阴性。

(四)试验法类型 根据加样层次和酶标记物不同,其方法可分很多类型,可按测试对象和试验目的不同选用最适的方法,常见的类型如下。

1.间接法 用于测定抗体,其操作程序为:抗原包被→待检血清→酶标抗抗体→底物显色。如待检血清为人、、牛等动物时,亦可用酶标SPA(PFA)代替酶抗抗体,称为PPA-ELISA。

2.双抗体法 用于检测大分子抗原,其操作程序为:抗体包被→待测抗原→酶标抗体→底物显色。

3.双夹心法 既可用于测大分子抗原,也可用于测抗体。本法需制备与待测抗体不同源的第一抗体(Ab1)和针对待测抗体的抗抗体(Ab2),其程序为:异源Ab1包被→待测抗原(或已知抗原)→同源Ab1(或待测抗体)→酶标Ab2→底物显色。

4.竞争法 用于测定小分子半抗原,分试验组、对照组作平行试验,其操作程序为:

对照应显色,可根据颜色变浅的程度,估测待测抗原含量。

5.酶标生物素和亲和素复合(ABC)法 当待检样中抗原含量很微量时,可用生物素(B)-亲和素(A)系统使ELISA反应放大,从而提高灵敏度,本法需制备生物素标记抗体和酶标记生物素,以亲和素搭桥使二者连接,其操作程序为:抗体包被→待测抗原→生物素标记抗体→亲和素和酶标生物素复合物(ABC)→底物显色。ABC已有商品供应。

6.酶—抗酶抗体(PAP)法 用于检测抗体,需事先制备可溶性酶-抗酶抗体复合物(PAP)和搭桥用抗抗体。其程序为:抗原包被→待测抗体(兔)→抗兔→PAP(抗酶抗体用兔制备)→底物显色。如待测抗体为猪抗体,则其后尚需加一层兔抗猪。其后再加羊抗兔,PAP已有商品供应。

(五)待检血清A值的校正 为了使不同次实验的结果便于比较,特别是进行半定量或定量试验时,实测样品的A值需与标准阳性血清A值进行校正,通常是将指定稀释度的标准阳性血清A值调整至1.0。即试剂盒中供给的标准阳性血清的A值为1.0。读取样品和阳性血清的A值后,按下式进行校正。

如待检物是抗原,亦需同样进行校正。

(六)结果表示法 本法可用于定性、半定性和精密定量,根据要求不同有很多结果表示方法。

1.吸光度值(A)法 主要用于定性试验,可直接用吸光度的校正值来表示。通过将大批阴性样品测定时所得的校正值进行统计,算出XN±SD,然后以XN+2SD或X+3SD作为阳性临界值(PNTV),大于PNTV者判为阳性。

2.P/N比值法 是待检样品校正值与阴性样本校正均值之比值,即:

以P/N比值大于2或3判为阳性。

3.终点法 用于半定量是将待检样品进行同样的连续倍比稀释,试验后,以出现阳性的最大稀释度作为反应终点。

4.绝对含量法 此法主要用于小分子半抗原的定量分析。每次试验时,均需用一块板作标准曲线,将反应所得的A均值对浓度进行直线回归,测样品的A均值(通常用2~4孔)后,即可按公式或在标准曲线图上算出待检样的浓度。

5.50%抑制率 在竞争法中,一般是抑制率表示,并根据抑制率与浓度的关系可以估算出样品中待测物含量。抑制率是指使已知标准样反应的吸光值降低一半的百分率(50%)。以待检样使标准样反应抑制50%时判为阳性,抑制率的计算公式为

以抑制率对浓度进行回归(或作图),据此就对未知样本进行测算。

(七)应用实例

例一 PPA-ELISA测猪瘟抗体

本法用于猪瘟防疫效果监测,防疫密度检查和群体免疫水平的分析。

1.材料准备

(1)器材 参见(二)。

(2)纯化抗原 用猪瘟兔化毒的细胞培养物浓缩提纯制成,为冻干制剂,用前稀释。

(3)标准阳性血清和阴性血清 均用猪制备,冻干,用前稀释。

(4)各种缓冲液,包被液、洗涤液和底物溶液等均按说明书稀释。

上述制品已有成套诊断药盒供应。

2.操作方法

(1)用包被液将纯化抗原稀释成1∶80,加入滴定板,每孔100μl,置4℃作用12h,洗涤3次,每次1~3min,甩干。

(2)用稀释液将待检血清作1∶80稀释,加入滴定板,每孔100μl,每样做双孔重复。另设阳性血清、阴性血清和空白对照各2孔,分别加1∶80的血清和稀释液100μl,置37℃反应2h,洗涤3次。

(3)加入1∶120的酶标SPA(PPA)溶液,每孔100μl,置37℃作用1h,同上法洗涤3次。

(4)每孔加底物溶液100μl,于37℃作用20min,加入50μl浓硫酸终止反应。

(5)用波长为490nm的滤光片,测定各孔A490

3.结果判定

(1)A490>0.17(XN+3SD)者判为阳性,≤0.17为阴性。

(2)A490 0.3为100%保护线,>0.3者攻毒100%保护,>0.17至<0.3的猪攻毒保护率在75%左右,<0.17的阴性猪,如为母源抗体则攻毒不保护,如系免疫猪则仍有少数可获保护,但在估测群体免疫水平时可以忽略不计。

(3)群体总保护率估算公式为

免疫良好的群体总保护率多在95%以上,总保护率小于50%者,显示免疫无效,属猪瘟易感群体。阳性率低的群体上述公式可出现误差,说明书上另有检索表可供查照。

4.注意事项

(1)为减少操作误差,待检血清所测得A值应按(五)法加以校正。

(2)如采用DG3022A型酶联免疫检测仪,该机备有相应软件,只需按说明书输入所需数据,先测标准阳性孔,然后按编号顺序检测各样品孔,即能自动打印出样品号,校正后的A值及其均值、ET(ELISA效价)、阴性还是阳性(-/+)、是否达到保护线(P/D)等数据。

例二 ELISA法测定孕酮

检测体液中的孕酮水平,不仅用于家畜的发情鉴定和妊娠诊断,而且可以监测母体生殖疾病。已有试剂盒供应。

1.材料准备

(1)孕酮标准品和酶标记物 风干和冻干分装,用前按说明书稀释。

(2)抗孕酮IgG 冻干分装,用前稀释。

(3)缓冲液 包被液、稀释液、封闭液、洗涤液、酶标化物溶液和底物溶液等均按说明书稀释,4℃保存备用。

(4)器材 参见(二)。

2.操作方法

(1)抗体包被 用包被缓冲液50ml稀释抗孕酮IgG(5支),加入96孔滴定板,每孔100μl,A、B、C排的第1孔不加抗体包被,留作空白对照,加盖置4℃冰箱,包被20~24h。

(2)封闭 取出包被板,甩掉包被液,然后在各孔内加封闭液200μl,室温反应1.5~2h后,甩掉封闭液,用洗涤液洗涤5次,每次静置2~3min,最后,用吸水纸将板吸干。置于干燥器内4℃保存备用(可保存二个月)。

(3)样本稀释 取样本25~50μl,用测定缓冲液稀释100~200倍(根据样本预测的孕酮水平而定,以保证稀释后样本中的孕酮水平在标准曲线范围内)。

(4)加样 在包被A排第2~12列各孔内依次加待测样100μl/孔,B、C排重复A排加样。在D、E排按照0;12.5,25,50,100,200,400,800pg/ml的顺序加标准孕酮,每个梯度重复3次,作为标准曲线对照,F、G、H三排中,第1~12列各孔内依次加待测样,每板可测23个样品。加样后,将板置于冰箱中(5~10分钟),同时配制标记液。

(5)加标记物 取出载体板,各孔内加标记液25μl,置于37℃培养箱中反应30min。

(6)取出反应板,甩掉反应液,用洗涤液洗涤5次,每次2~3min,同时配制底物液。

(7)各孔内加酶底物液100μl,于室温避光反应40~60min,此时反应孔内液体呈绿色。

(8)各孔内加终止液25μl,此时反应孔内液体呈黄色。

(9)用酶标仪在450nm波长处读取各孔的吸光值(A450)。

3.结果计算 以浓度为横座标,不同孕酮浓度的A450均值为纵座标,用半对数坐标纸绘制标准曲线。待测样本的A450均值在标准曲线上所对应的横坐标值,乘以稀释倍数即为待测样本的孕酮含量。也可将标准曲线直线化。设孕酮浓度为x,光密度值的logit值()为y。可得回归方程y=A+Blgx,当相关系数为-0.995以上时,回归方程有效,否则需剔除坏点。

二、免疫酶组化法

以酶标抗体来探查组织细胞内外抗原分布及含量的示踪技术,与荧光抗体法相似,但以酶标抗体代表荧光抗体,然后通过生色产物为不溶性固定的显色剂如3,3-二氨基联苯胺四盐酸盐进行显色,反应产物呈棕色微粒沉淀于酶标物的部位。结果不需用荧光显微镜,而只需要普通显微镜或放大镜就可观察。阳性反应者为棕红色。

(一)材料准备

1.器材 玻片、显微镜等。

2.酶标抗体 同ELISA法,用前稀释至最适浓度(事先滴定)。

3.溶液配制

(1)底物溶液

3,3′-二氨基联苯胺四盐酸盐(DAB) 25mg

0.05mol/LpH7.6Tris-HCl缓冲液 50ml

(即将25ml0.2M三羟甲基氨基甲烷加39ml的0.1 N HCl即配成)

30%H2O2 15μl

将DAB倒入缓冲液中,避光,搅拌3h,置4℃下避光。临用前,用滤纸过滤后,加入H2O2即使用。

(2)抑制内源酶溶液

0.01mol/L,pH7.4 PBS 100ml

30%H2O2 30μl

1%NaN3 1ml

(3)洗涤液和稀释液 同ELISA法。

(二)操作方法

1.制片、固定同荧光抗体法。

2.将固定后的标本片浸于抑制内源酶溶液中,37℃作用30min以消除其同源酶,置洗涤液缸内,洗涤3次,蒸馏水缸内洗涤2次,每次3min。

3.取出,自然干燥或吹干,滴加最适稀释的酶标抗体,置湿盒内37℃作用45min,用上法洗涤。

4.不等玻片干燥,将其浸于底物溶液中,置37℃作用30min,洗涤同前。

5.吹干,镜检。

(三)结果判定 抗原所在部位染成棕黄色,着色细胞为阳性细胞。

(四)注意事项

1.试验时应取健康组织用同法染色作为对照,以观察是否出现非特异性染色。

2.标本片用PBS代替酶标抗体染色,以观察内源酶是否被抑制。

3.本法亦可应用间接法,PPA(即酶标SPA)法等,可参见ELISA法。

三、限量抗原底物珠法(DASS)

琼脂糖珠Sepharose 4B经CNBr活化后,抗原(或抗体)可共价结合到珠表面,表面残存的活性基团可用氨基化物如乙醇胺进行封闭,将此珠与相应待检物进行反应就在其表面形成免疫复合物,再用酶标抗体等反应,以类似酶免疫组织化学进行染色,观察。

(一)底物珠的制备

1.抗原底物珠的活化 如果所购的Sepharose4B已经溴化氰活化,可以直接与蛋白质偶联,否则可按下述进行活化。

(1)将大小适中的二层新华滤纸贴于布氏漏斗上,用蒸馏水浸湿后,倒进Sepharose4B珠悬液。抽干后用蒸馏水洗3~5次(共2000ml左右),再抽干;

(2)称取抽干后的Sepharose4B凝胶,并按每克重量加入1.0ml5mol/L磷酸钾缓冲液(4℃)充分悬浮凝胶;

(3)在通风条件下,按每克凝胶重称取25~30mg CNBr(预先在乳钵中碾碎),并溶于1.0ml冷蒸馏水中,搅拌溶解;

(4)在搅拌条件下,将其缓缓滴于Sepharose4B悬液中,2min内加完,反应8~10min(20℃);

(5)倒入布氏漏斗,迅速用1~4℃的蒸馏水洗涤,保证每克凝胶不少于50ml蒸馏水;

(6)最后用0.1mol/L NaHCO3(含NaCl0.5mol/L)洗涤(每克凝胶25ml),2~3min内完成,并恢复原体积,此即为活化的Sepharose4B珠。

2.Sepharose4B的致敏 于烧杯内将抗原用0.1mol/L NaHCO3(含NaCl0.5mol/L)稀释成1mg/ml,立即与等体积的活化的Sepharose4B珠混合,并于室温下搅拌6h,离心500rpm,收上清液。继续用0.1mol/LNaHCO3液洗涤6次,合并上清,并测算蛋白含量,根据下述公式计算交联率

3.致敏Sepharose4B珠上残存活性基团的封闭于致敏的Sepharose4B凝胶中,加入5倍体积的0.5mol/L氨基正丁酸溶液中,室温下搅拌6~18h。离心,并用5倍体积的0.1mol/L硼酸盐缓冲液和醋酸缓冲液交替洗涤3次。最后用0.01mol/LPBS洗涤3次,悬浮于PBS中,加入0.1%NaH3保存于4℃冰箱,或用25%乳糖保护冷冻干燥。以上就为制备好的限量抗原底物珠。同样,也可制成限量抗体底物珠。

(二)溶液配制

1.稀释液、洗涤液和底物溶液均参照上节。

2.乙醇-乙醚(1∶1)混合液(玻片清洗用)。

3.2%明胶铬矾溶液(涂玻片用)。明胶2g,加水100ml,于60℃水浴中溶解,加入铬矾50mg,于4℃下保存。

(三)试验方法

1.取洁净无划痕的玻片用无水乙醇-乙醚混合液浸泡12h,取出待挥发干后,涂一层2%明胶液,于室温下空气干燥2h;

2.将玻片划成10个方格,上排每格加致敏底物珠10~20粒,再在室温下干燥2h以上。此种制备片在4℃下可保存1周,-50℃下可保持数月;

3.在底物珠表面上加上待检血清10μl,反应30min(37℃),用含0.5mol/LNaClPB洗10min,反复2次;

4.晾干后,加上稀释的酶标抗抗体(或酶标A蛋白)10μ1,反应30min。

5.洗涤两次后,加底物溶液1滴显色5min。浸入0.05mol/LTris-HCl缓冲液,漂洗20min,取出凉干。

(四)结果观察 于显微镜下低倍放大观察,阳性标本呈不同程度棕黄色,阴性应不显色。

(五)注意事项 试验时,在每块玻板上,应设立阴性血清,阳性血清和未致敏底物珠对照,以免误判实验结果。

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